這么用血清，當心實驗被毀！

細胞實驗是眾多科研項目的基礎，而細胞培養作為細胞實驗最基礎的技術之一，更是滲透到了生物學研究的方方面面。

打好根基，上層建筑才能穩固。細胞培養中血清使用方法的一些小細節，往往能夠影響實驗結果的好壞，甚至是成敗。

今天我們匯總了一些錯誤案例，拿給給大家敲敲警鐘，這些錯誤，可千萬別再犯！

4℃過夜解凍   ×××

三步法解凍    √√√

如何解凍血清，也是個老生常談的話題了。很多小伙伴還是習慣將血清從-20℃冰箱中拿出來后，直接丟進4℃冰箱過夜，甚至是直接放在操作間，室溫環境下解凍，第二天一早直接開始實驗。

這樣做都會導致血清出現融化不均勻的情況，使血清產生大量沉淀，影響血清品質。

一旦產生大量沉淀，不少小伙伴就會離心或者過濾取出絮狀物，讓本來營養豐富的血清，變得“寡淡”，細胞缺少相關蛋白、因子，自然更容易“營養不良”，細胞狀態不好，實驗結果也可想而知。

因此，強烈推薦大家使用三步法溶解。

這樣解凍的血清質地澄清且均勻，不易產生大量沉淀。保證血清品質，讓細胞營養充分，做起實驗來更得心應手。

配超多培養基慢慢用×××

現用現配                  √√√

為了省事，會解凍一大桶血清，然后配制成完全培養基，放在冰箱里慢慢用。這其實是非常不好的習慣。

完全培養基中的成分，例如：L-谷氨酰胺、抗生素，在室溫甚至是4℃冰箱中，都是比較容易分解的，血清也容易產生沉淀。

因此，如果配制好的培養基，長期儲存在4℃冰箱中，極易變質、失活，對于細胞來說，“補品”秒變“毒藥”，所以我們建議，完全培養基在4℃冰箱中存放不要超過7天。

血清一定要熱滅活   ×××

根據情況決定          √√√

對于正規的胎牛血清而言，是不需要熱滅活的。

熱滅活的目的是消除補體對實驗的影響，正規胎牛血清采血時間是5-8月齡的胎牛，此時牛胚胎還未形成完整的補體系統，因此熱滅活就顯得多此一舉了。

不僅如此，熱滅活后的血清，更容易產生沉淀，影響血清品質，導致細胞生長緩慢。沉淀物還容易擾亂視野，造成細胞被污染了的假象。實驗者“敵我不分”，細胞背起了“污染”的“大鍋”。

所以，如果不是從事免疫學、ES細胞、昆蟲細胞、平滑肌細胞相關研究時，且使用的血清非胎牛血清，大可不必進行熱滅活！